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Apr. 24th 2008

Apr. 30th 2008

May 8th 2008

Teilnehmer
Philipp Mappes, Wolfgang Schamel, Kilian Bartholomé, Katja Arndt, Kristian Müller, Dario Hermida Aponte, Normann Kilb, Robert Gawlik, Simone Weber, Veronika Götz, Kristina Brückner, Kathrin Pieper, Michael Kneib, Moritz Busacker, Sabine Jägle

Wie soll das Projekt durchgeführt werden?
Zuerst soll die DNA Struktur auf dem etablierten T-Zellsystem getestet werden und dann werden wir versuchen ein künstliches System herzustellen. Als cytoplasmatische Domäne kommen beispielsweise der EGFR oder Fas in Frage. Da Fas bei der Apoptose beteiligt ist könnte man hier dann die erfolgte Signalweiterleitung anhand des Zellsterbens beurteilen. Weitere Systeme die für die Signalweiterleitung in Frage kommen wären z.B. NF-kappaB, das MAP-Kinase-Jun-Fos-System oder durch Split-Enzyme, die bei Stimulation der Zelle zusammenkommen und dann aktiv werden.

Aufbau der Nanostruktur
Wie teuer wird es, wenn wir uns die mit Nitrojodophenol gekoppelten Oligos synthetisieren lassen? Philipp und Michael werden sich mit der Firma in Verbindung setzen und ein Preisangebot einholen. NIP kann von der Firma Biosearch Technologie gekauft werden.

Kontrolle der Nanostruktur

• Als eine Negativkontrolle sollten wir eine DNA Nanostruktur ohne gekoppelte Oligos herstellen und prüfen, ob hier auch eine Bindung zustande kommt
• Um zu prüfen ob die Oligos bzw die NIP wirklich die geplanten Abstände haben könnte eine Nanostruktur mit einem Fluorophoren FRET Paar gemacht werden. Dadurch könnten die Abstände der gekoppelten Oligos genau bestimmt werden

May 23th 2008

Jun 2th 2008

Teilnehmer
Sabine Jägle, Normann Kilb, Robert Gawlik, Kristian Müller, Philipp Mappes

Besprochenes

• Anbringen längerer NIP-Linker um optimale Bindung an den AK zu gewährleisten.
• NIP-Abstände betragen (rechnerisch) 6 nm - 7 nm.
• Einbau des TCR in die Grafik um einen Größenvergleich zu haben.
• Suche nach einer geeigneten Transmembranhelix für den künstlichen Rezeptor.
• Kostenvoranschlag von BIOSEARCH für 10 Oligos mit NIP am 5' bzw. 3'-Ende: 3000,-US$ bei unbekannter Kopplungseffizienz
• => Bestellung voraussichtlich über PURIMEX, Anfrage/Planung läuft...

Jun 13th 2008

Teilnehmer
Michael Kneib, Robert Gawlik, Philipp Mappes, Simone Weber, Kristina Brückner, Sabine Jägle, Kathrin Pieper

Bestellung der NIPs
Aufbau der DNA-Nanostruktur mit den gekoppelten NIPs wurde besprochen und entschieden:

Frage: Wie sind die genauen Abstände zwischen den DNA-Helices? --> Rothemund

Die nächsten Schritte
- Literatursuche für TCR-Clustering
- Literatursuche Transmembranhelices, Signalsequenzen
- Planung des künstlichen Systems mit Antikörperfragment, Transmembranregion, Split-Enzym, Enzymtest
- EGFR als weiteres Testsystem

16. Juni 2008 10.00h

Vorbeireitung der Präsentation für Dienstag 12.00h

17. Juni 2008 12.00Uhr

Besprochenes

- Bis Freitag werden nach Rücksprache mit Schamels Doktorandin die NIP-gekoppelten-Oligos bestellt --> Phillip
- Die Vektoren für die Klonierungen zusammentragen (Dina/Christina: Vektor mit CMV-Promotor) --> Kathrin
- Schamels Versuche zum TCR "nachkochen" --> Terminabsprache mit der Doktorandin
- Klonierungsstrategien entwerfen (dabei IGEM-Schnittstellen-Vorgaben beachten)
- Literatur-Recherche Transmembranhelices WF DeGrado
- Programm für Klonierungen: Emboss (emboss.org)

23. Juni 2008 12.00Uhr

3. Juli 12.00 Uhr

Teilnehmer
Robert Gawlik, Michael Kneib, Kathrin Pieper, Simone Weber, Daniel Hautzinger, Sabine Jägle, Philipp Mappes, Kristian Müller

1. Vektoren
Philipp und Kathrin haben sich in GCG eingearbeitet. Dabei hat sich gezeigt, dass in der Fab Fragment Sequenz eine IGEM Standard Schnittstelle befindet. In dem Vektor von Christina befinden sich 7 Schnittstellen.
Es bieten sich die Möglichkeiten der klassischen Mutagenese oder der Gensynthese. Von Geneart gibt es das Gensyntheseangebot 20 Cent pro Base. Dies gilt allerdings nur für 2500 Euro, anschließend gilt der Preis von 50 Cent pro Base. Falls wir die Gensynthese machen wollen, sollte man bei Geneart anfragen, ob die Vektoren, die sie verwenden auch keine IGEM (EcoRI, XbaI, SpeI, PstI) und keine von unseren Schnittstellen (NgoMIV, AgeI) haben.
Die restlichen Sequenzen, die noch gefehlt haben, hat Mahima inzwischen im richtigen Format geschickt, sodass diese Sequenzen nun auch noch auf die Schnittstellen untersucht werden können (Kathrin und Philipp?).
Man könnte auch noch mal auf der bei den IGEM parts nach Vektoren mit CMV Promotor schauen.

2. Konzentration der DNA Struktur
Daniel hat eine Konzentration von 20 nM berechnet, die eventuell auch auf 200 nM erhöht werden könnte . Laut Mahima ist aber mindestens eine Konzentration von 2 µM nötig. Eventuell können wir eine geringere Konzentration einsetzen, allerdings können wir dann wahrscheinlich keine Unterschiede mehr detektieren, ob 2, 3 oder 4 NIP's gebunden haben.

3. DNA Strukturen

• Kontrolle ob DNA mit NIP's an die Zellen bindet. Dafür DNA Struktur mit 4 NIP's und 2 Fluorophoren. Den Nachweis der Fluoreszenz als Beweis für die Bindung der DNA Struktur an die Zellen. Siehe auch Konfokale Mikroskopie.
• Negativkontrolle. DNA Struktur ohne NIP's, mit 2 Fluorophoren. Nachweis dass diese Struktur alleine nicht zu einer Stimulation des T-Zellrezeptors führt.
• Michael, Simone und Daniel machen M13 Phagen Prep und den Oligopool.
  

4. Nachweis der T-Zellrezeptor-Stimulation

• Ca-Messung: Bei 530 nm. Gerät im MPI ist allerdings kaputt?
• GFP Marker: Genexpression ist nach 12-18 h nachweisbar. GFP positive Zellen werden mit dem FACS bestimmt. Eventuell wäre es möglich ein FACS in der Uniklinik zu verwenden. Kathrin erkundigt sich bei Dr. Eibel.
  

5. Konfokale Mikroskopie

• Im MPI muss man zuerst ein Trainingsprogramm absolvieren, worauf man allerdings auch 3 Wochen warten muss
• Wir könnten das konfokale Mikroskop im Fischbach Labor nutzen. Da stehen die Wellenlängen 488nm und 568nm zur Verfügung.Ansprechpartner ist Gerit.
  

6. Allgemeines

• Rezepte von Puffern usw auf's Wiki schreiben
• Wenn man etwas Neues in Erfahrung gebracht hat Rundmail schreiben, später dann aber auch ins Wiki
• Laborjournal wird chronologisch geführt
• Anlegen eines Registers z.B. auf der ersten Seite des Laborbuchs. Hier kann man dann noch mal ausführlicher beschreiben was genau in den Eppi's drin ist
  

10. Juli 2008 12:00 Uhr

Teilnehmer:

Simone Weber, Sabine Jägle, Kathrin Pieper, Phillip Mappes, Norman Kilb, Robert Gawlik, Daniel Hautzinger, Michael Kneib, Kristian Müller, Kristina Brückner

1. Sicherheitseinführung

> interne Notrufnummer: 2000

2. Stand der Dinge

• M13-Phagen DNA wurde geprept
• inzwischen sind alle Oligos eingetroffen --> Pool wurde hergestellt indem alle drin sind, außer denen, die Fluoreszenzmarkiert werden oder NIPs tragen
• mit DNA-Origamie wurde begonnen --> AFM-Betrachtung 11.07.08
• ersten Oligos müssen nachbestellt werden (~ 50€)

3. Lösung für Konzentrationsproblem

• Ca²⁺ - Einstrom direkt unter dem Fluoreszenzmikroskop anschauen
• welcher Farbstoff hier verwendet werden soll --> wird am Freitag, 11.07. besprochen

4. Überlegung für einfaches synthetisches System

• könnten bereits vorhandenen Vektor nutzen, der β-Kette des TCR + das Fab-Fragment enthält
• auf cytoplasmatische Seite einfach noch β-Lactamase dran synthetisieren
• zeigt nur, das die NIPs die β-Ketten zusammen und dadurch die die β-Lactamase aktiviert wird

5. Substrat für β-Lactamase

• muss demnächst bestellt werden
• welches --> Norman informiert sich

6. Protokolle für Transformationen

• in Kristians Labor vorhanden

7. Positiv Kontrolle für Transfektionen

• Norman kümmert sich darum

8. Suche nach weiteren Vektoren

• bei Toolbox Freiburg nachfragen

9. zweites System für Multimerisierung mit anderen Antikörpern

• Antifluorescin-Antikalin (Arne Skerra) --> Publikation in Literatur!
• Andreas Blukthuhn (?) --> Dapin (> Kristian kümmert sich darum)

10. intrazellzläre Domäne des EGF-R

• <a href="http://www.ebi.ac.uk">www.ebi.ac.uk</a>      --> SRS    --> Uniprot
• <a href="http://www.expasy.ch">www.expasy.ch</a>    --> swissprot
• Michael kümmert sich darum

16 Juli 2008 12.00h

Teilnehmer:
Robert Gawlik, Michael Kneib, Kathrin Pieper, Simone Weber, Moritz Busacker, Sabine Jägle, Philipp Mappes, Kristian Müller
1. DNA-Origami:

• nach geglücktem 1. Ansatz jetzt der Versuch mit DNA:Oligos = 1:5 (anstelle von 1:20 wie bisher)
  
• RPMI-Medium oder Ringer-Solution imaging-geeigneter?
  
• Herstellung von Fluorophor-Origami für erste Imaging-Versuche; Fluoreszenz-Mikroskopie im MPI oder Fischbach-Labor?
  
• Stabilität des Produktes (Transport etc.)?
  

Vektoren / Synthetisches Rezeptorsystem:

• nach wie vor noch kein uneingeschränkt nutzbarer Vektor verfügbar; evtl. vom Ljubljana-Projekt 2007 (CMV-Promoter als Modul)?
  
• deshalb evtl. Umweg über "Zwischenlagerungs-Vektor"
  
• Planung und Bestellung folgender Parts:
  

-Fab-Singlechain
-Signalsequenz für die Membranintegration?
-Transmembranregion?
-evtl. Split-Fluorophor?

• Integration von Kurzlinkern in die einzelnen Parts?
  
• für eventuelle EGFR-Parts Rücksprache mit Tillmann Brunner, ZBSA (downstream-signaling)
  

23 Juli 2008 12.00h

Teilnehmer:
Robert Gawlik, Philipp Mappes, Kathrin Pieper,Sabine Jägle, Simone Weber.

EGF-Rezeptor (EGFR):

• EGFR als Transmembrandomäne sinnvoll da er sehr groß ist.Auf der T-Zell-Oberfläche befinden sich viele große Moleküle, diese sind viel Größer als die Rezeptoren. Bei einem kleineren Rezeptor wäre es möglich, dass die großen Moleküle den Rezeptor überlagern und die Origamis nicht binden können.

• Der EGFR könnte als ganzes System genutzt werden, an dem die single chain über einen langen Linker gebunden wird. So werden Moleküle weit genug heraus gebracht um über andere Moleküle herauszuragen.

• Drei mögliche Klonierungsvorschläge:

Fura 2/ Indo-1:

• können als Farbstoff für Ca2+ Farbstoffe verwendet werden.

• wir benutzen Fura 2AM -> wird auf die Zelle gegeben, aufgenommen, in den Zellen spalten Proteasen den AM- teil ab. Der Farbstoff kann dann als gespaltenen Form die Zelle nicht mehr verlassen.

• gemessen werden Emissionswerte in einem so genannten Ratiomeasurement, d.h. es wird bei 2 Wellenlängen gemessen und das Verhältnis daraus berechnet.

Aug. 7th 2008 Teilnehmer:
Robert Gawlik, Philipp Mappes, Normann Kilb, Sabine Jägle, Kristian Müller, Moritz Busaker.

• problem: Where is the next Ca2+ measurement?

• Take data of the Ca2+-measurement from Prof. Schamel. Titration to get the right concentration?

• pictures from measurement should be handled with "Zeiss Software" (Sabine)

• Carry over T-cells from Mahima (MPI) to kristians lab (Sabine)

• ATG-Biosynthetics synthesizes all parts in a vector without unintentional iGEM restrictionsites

• Invitrogen CCF4AM and CCF2AM for bla detection = LiveBLAzer™

pricelist:

• CCF2AM/CCF4AM 5mg 13.910.00 €

• CCF2AM Loading Kit 200 μg 815.00 €

• LiveBLAzer™-FRET B/G Loading Kit 200μg 690.80€

brochure for further information [http://tools.invitrogen.com/content/sfs/manuals/liveblazer_FRETBGLoadingKit_man.pdf brochure_liveblazer_FRETBGLoadingKit]

Aug. 28th 2008

Sept. 11th 2008

Attendees: Sabine Jägle, Phillip, Norman Kilb, Christian Müller, Wolfgang Schamel, Simone Weber

Themes:

1. CMV Promotor
Sabine tried to amplificate the CMV Promotor (in the vector) -> it didn’t work!
Improvements:     

• Cut the CMV promoter out (of the vector) and then try again to amplificate it.
  
• Prove, if we used the right primer.
• Turn the temperature down a bit.
• Use a positive control to be sure the polymerase and buffer did work

• Unfortunately we didn´t see a calcium influx in the cytoplasma membrane when we incubated the cells with our origami.
• We have to try to increase the concentration of our origami
• For the next measurement we also have to proof that TA/MgAc itself has no influence on the calcium influx.
  

• Like last time both the NIP origami and the control origami (without NIP) bound to our cells :-(
• We should do the next measurement in Ringer-solution. Therefore we have to test if the origamis are stable in the Ringer-Solution with 12,5mM Mg/Ac!!!
• We should repeat this measurement with B-Cells (with a “NIP-receptor”), to see if the origami (with and without NIP) bind to those. Maybe some surface structures of the T cells bind unspecific to our DNA.
  

Sept. 18th 2008

attendees
Philipp Mappes, Katja Arndt, Kristian Müller, Normann Kilb, Robert Gawlik, Simone Weber, Kathrin Pieper, Sabine Jägle

organisatory

• Bioss agrees to sponsorship
• team picture for wiki
• next meeting: wednesday, Sept. 24th 15.30
• lab: new box-arrangement (Normann)
• table for cloning strategy (Kathrin)

Ca-measurement

• date for measurement at the AFM (Nitschke)
• optionally: measurement at the Henneke lab --> children's clinic (Sabine)
• optionally: measurement at Imaging Facility in the medicin clinic --> searching for authorized contact-persons

Wiki

• carry over the inofficial wiki content to the official one (Robert und Philipp).
• final report about the whole project (everyone)

part-order

• ask for the ATG orders (need to send the plasmid again?) (Philipp)
• obscurities at order BCR-transmembraneregion --> control and correction(Kathrin)
• primer-order to synthesize signalpeptide by PCR (Kathrin)

control of DNA-Origami binding to cell-surface

• add wash-steps after addition of DNA-origami
• cells should keep in Mg2+ for measurement
• possibly the measurement can be carried out by ELISA --> immobilized AK to bind origamis; fluorophors fused to the oligos can be detected or use biotin-fused Oligos to get a detection by streptavidin fused enzyme reaction.
• control: monoclonal AK able to bind DNA-origami (Simone)

Sept. 24th. 2008

Sept. 29th 2008

Oct. 7th 2008'

Oct. 17th 2008

attendees:
Philipp Mappes, Katja Arndt, Kristian Müller, Normann Kilb, Robert Gawlik, Michael Kneib

Final report

• structure equal to a scientific paper containing the parts Abstract, Introduction, Materials and Methods, Results
• fusion of all sections we worked in: Origami, AFM, FACS, CA²⁺/Fura measuremt, cell cultures, modeling, ethics
• quotation of literature through autor and year of publication in the text (Max Muster, 2007), full quotation in references in the end
• deadline Friday Oct. 24th 2008

official wikipediasite

• continue the labjournal on the official page only
• not too much linking: maintenance of the flow of information
• all embedded files should start with "Freiburg2008"

iGEM parts

• uploading the parts starting on Monday Oct. 20th 2008

Oct. 21th 2008

attendees:
Moritz Busaker, Philipp Mappes, Kristian Müller, Normann Kilb, Robert Gawlik, Michael Kneib, Kathrin Pieper, Simone Weber

Cloning:
At least - All the constructes are cloned!!!

construcs:

pMA - singalpeptide – scFv-anti-NIP – gggs-Linker – transmembran region - X – pMA

X :

• bla1(1/2 beta-Lactamase)-
  
• bla2 (1/2 beta-Lactamase) –
  
• split-linker-C-CFP(Cerutan) –
  
• N-CFP –
  
• split-linker-C-GFP (split venus)–
  
• N-GFP –
  
• luciferase 1 (58) –
  
• luciferase 2 (57) –
  

Next steps:
1) We want to test, if the transmembran region really is located in the membrane
Therefore we want to clone a constructe which expresses a YFP on the cytoplasmic side of the receptor.
Construct:
- singalpeptide – scFv-anti-NIP – gggs-Linker – transmembran region - split-linker - bla1 - YFP -

2) We also want to test, if we able to bringe the receptors together by using a NIP coupled peptide.
Therefore we need the peptides from Schamels group -> Norman will ask them.

3) Origami-We want to try if the Origami are able to bring two or more receptors together.
Have to produce new Origami -> Michael and Norman

Next meeting: Oct. 23th 2008