Team:Chiba/notebook/input/august

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(Difference between revisions)
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== 2008.8.30 ==
== 2008.8.30 ==
-
<BR>Digestion:'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
+
'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
-
<BR>x-RBS-cI-s-p(780bp)
+
 
-
<BR>混ぜ表
+
x-RBS-cI-s-p(780bp)
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="257"></td>
<td width="257"></td>
Line 439: Line 441:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→30μlゲル抽出
+
->30μlゲル抽出
-
<BR>→ゲル抽出:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|Gel Extract]]'''
+
 
-
<BR>→Zymo:'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|ゲル抽出]]'''
 +
 
 +
->'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
 +
 
 +
<br>5μ抽出,うち1μlをゲルチェック→OK,4μlはLigation用
 +
 
 +
 
 +
'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
 +
 
 +
-e-x-Ptet-s-p-(PMB1,Amp)(Insert:54bp,Vector:2079bp)
-
<BR>5μ抽出,うち1μlをゲルチェック→OK,4μlはLigation用
+
混ぜ表
-
<BR>
+
-
<BR>Digestion:'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
+
-
<BR>-e-x-Ptet-s-p-(PMB1,Amp)(Insert:54bp,Vector:2079bp)
+
-
<BR>混ぜ表
+
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="257"></td>
<td width="257"></td>
Line 480: Line 487:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→30μlゲル抽出
+
->30μlゲル抽出
-
<BR>ゲル抽出:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|Gel Extract]]'''
+
-
<BR>→Zymo:'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
+
-
<BR>→SAP:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/dephosphorylation|SAP]]'''
+
'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|ゲル抽出]]'''
-
<BR>混ぜ表
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
 +
 
 +
->'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/dephosphorylation|SAP]]'''
 +
 
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="57"></td>
<td width="57"></td>
Line 513: Line 523:
5μ抽出,うち1μlをゲルチェック→OK,4μlはLigation用
5μ抽出,うち1μlをゲルチェック→OK,4μlはLigation用
-
<BR>Ligation:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/ligation|Ligation]]'''
+
 
-
<BR>混ぜ表
+
'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/ligation|Ligation]]'''
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="200" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="200" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="257"></td>
<td width="257"></td>
Line 543: Line 555:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→Transformation(XL10G):'''[[Team:Chiba/protocol/transformation|Transformation]]'''
 
-
<BR>→CFU40(b.gは22)
 
-
<BR>コロニーPCR(16コつつく):'''[[Team:Chiba/protocol/PCR|PCR]]'''
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/transformation|Transformation]]'''(XL10G)
-
<BR>混ぜ表
+
->CFU40(b.gは22)
 +
 
 +
 
 +
コロニーPCR(16コつつく):'''[[Team:Chiba/protocol/PCR|PCR]]'''
 +
 
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<tr>
<tr>
Line 573: Line 589:
</tr>
</tr>
<tr>
<tr>
-
<td>dH2O</td>
+
<td>dH<sub>2</sub>O</td>
<td>11.7</td>
<td>11.7</td>
</tr>
</tr>
Line 581: Line 597:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→Insertチェックしたら1つだけ正しい位置にバンドが出現。そのコロニーを2ml培養し、mini prepした。
+
->Insertチェックしたら1つだけ正しい位置にバンドが出現。そのコロニーを2ml培養し、mini prepした。
-
<BR>→mini prep:'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/sigma|Mini prep]]'''
+
 
 +
->'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/sigma|Mini prep]]'''
 +
 
 +
 
 +
'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
 +
x-RBS-cI-s-p(780bp)
-
<BR>Digestion:'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
+
混ぜ表
-
<BR>x-RBS-cI-s-p(780bp)
+
-
<BR>混ぜ表
+
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="257"></td>
<td width="257"></td>
Line 623: Line 642:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
<BR>ゲル抽出:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|Gel Extract]]'''
+
 
-
<BR>混ぜ表
+
'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|Gel Extract]]'''
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="57"></td>
<td width="57"></td>
Line 641: Line 662:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
<BR>→Zymo:'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
 
-
<BR>→NFW5μlで溶出
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
-
<BR>ゲルチェック:'''[[Team:Chiba/protocol/gelcheck|Gel Check]]'''
+
 
 +
->NFW5μlで溶出
 +
 
 +
->'''[[Team:Chiba/protocol/gelcheck|Gel Check]]'''
 +
 
-
<BR>混ぜ表
+
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="57"></td>
<td width="57"></td>
Line 667: Line 691:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→ゲルチェックOK
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/gelcheck|Gel Check]]'''->OK
-
<BR>
+
 
-
<BR>Digestion:'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
+
 
-
<BR>-e-x-Ptet-s-p-(PMB1,Amp)(Insert:54bp,Vector:2079bp)
+
 
-
<BR>混ぜ表
+
'''[[Team:Chiba/protocol/digestion|Digestion]]'''
 +
 
 +
-e-x-Ptet-s-p-(PMB1,Amp)(Insert:54bp,Vector:2079bp)
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="257"></td>
<td width="257"></td>
Line 705: Line 733:
</table>
</table>
-
<BR>ゲル抽出:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|Gel Extract]]'''
+
'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/gelex|Gel Extract]]'''
-
<BR>混ぜ表
+
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="57"></td>
<td width="57"></td>
Line 723: Line 752:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
<BR>→Zymo:'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
 
-
<BR>→NFW10μlで溶出
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
-
<BR>→SAP:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/dephosphorylation|SAP]]'''
+
->NFW10μlで溶出
-
<BR>混ぜ表
+
 
 +
->'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/dephosphorylation|SAP]]'''
 +
 
 +
 
 +
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="57"></td>
<td width="57"></td>
Line 754: Line 786:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→37℃で1h、乾燥機(65℃)で15min,
+
->37℃で1h、乾燥機(65℃)で15min,
-
<BR>→Binding Bufferを90μl加え、VORTEX
+
 
-
<BR>→Zymo:'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
+
->Binding Bufferを90μl加え、VORTEX
 +
->'''[[Team:Chiba/protocol/DNA Purification/zymocleam|Zymo Clean]]'''
 +
 
 +
->NFW5μlで抽出
 +
 
 +
'''[[Team:Chiba/protocol/gelcheck|Gel Check]]'''
-
→NFW5μlで抽出
 
-
<BR>ゲルチェック:'''[[Team:Chiba/protocol/gelcheck|Gel Check]]'''
 
-
<BR>混ぜ表
+
混ぜ表
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="150" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="57"></td>
<td width="57"></td>
Line 784: Line 819:
→ゲルチェックOK
→ゲルチェックOK
-
<BR>Ligation:'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/ligation|Ligation]]'''
+
'''[[Team:Chiba/protocol/ligation/ligation|Ligation]]'''
-
<BR>混ぜ表
+
 
 +
混ぜ表
<table width="200" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<table width="200" border="4" cellpadding="0" cellspacing="0" bordercolor="#000000">
<td width="257"></td>
<td width="257"></td>
Line 814: Line 850:
</tr>
</tr>
</table>
</table>
-
→25℃で2h放置
+
->25℃で2h放置
-
→Transformation(XL10G):'''[[Team:Chiba/protocol/transformation|Transformation]]'''
+
->'''[[Team:Chiba/protocol/transformation|Transformation]]'''(XL10G):
-
<BR>→CFU40(b.gは22)
+
 
-
<BR><BR>
+
->CFU40(b.gは22)

Revision as of 04:54, 24 October 2008

8月の実験ログ

9月の実験ログはこちらから。
入力班のページに戻る

Contents

2008.8.20

PCR

  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](2007)①
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](2008)②
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22141 BBa_J22141](2007)③
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22141 BBa_J22141](2008)④
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_E0612 BBa_E0612](2008)⑤
>
Sample No
DNA tamplate 11111
FW primer 55555
VR primer 55555
dNTPmix 1010101010
thermo pol buffer 1010101010
DNA pol(VENT) 11111
dH2O 6868686868
TOTAL 100100100100100

-->Gel Check


>
Sample No.
Sample DNA 11111
loading dye 11111
dH2O 44444
Total 66666

→どれもバンド出ず。

Transformation

  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22141 BBa_J22141](2007)

→BBa_J22141のみコロニーがほとんど生えていなかった。(1個のみ)

2008.8.21

8.20にtransformationしたもの

  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22141 BBa_J22141](2007)

を2ml培養、12h。ただしコロニーが1個だけだったBBa_J22141は2ml培養の11h後にIPTGを20μl加え、 さらに1h培養した。



UV照射実験(プレート編)(~24日)
-Ptrc-LuxR-Plux-cI-colE1-Amp-,-PcI-GFP-p15a-Cm-(BW)の2plasmidを使用。
グリストをつついて、試験管で2ml培養。(LB-Amp,Cm)(LB-Amp,Cm,AHL100nM)の2種類。
37℃で12h培養後、濁ったらそれぞれを105希釈してAHLが入っていないものはLB-Amp,Cm,AHLが入っているものはAHL-Amp,Cm,AHL100nMのプレートにそれぞれ20μl撒く。
37℃で12h培養後、きちんとコロニーができていることを確認し、両方のプレートにUVを照射する。UVの波長は254nm,UVランプとプレートの距離は14cm。
UVを照射して9h後、21h後にそれぞれ両方のプレートに次の同じ操作をする。
両方のプレートのコロニーをつついてそれぞれ(LB-Amp,Cm),(LB-Amp,Cm,AHL100nM)2ml培養する。
37℃,で12h培養後、濁っていたので、それぞれを(LB-Amp,Cm),(LB-Amp,Cm,AHL100nM)のプレートに105希釈して20μl撒いた。


コロニー数

AHLなしAHL100nM
9h 606453
12h 146151


AHLが入っていないほうのコロニーはいづれも光っていた。→機能チェックはOK

2008.8.22

Mini prep


2ml培養した

  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22141 BBa_J22141](2007)

をミニプレした。

insert check:Digestion

  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J06650 BBa_J06650](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_J22141 BBa_J22141](2007)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2006)
  • [http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2007)

[http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2007)と[http://partsregistry.org/Part:BBa_R0051 BBa_R0051](2006)はsingleのみ、ほかはsingleとdoubleの両方。

混ぜ表

doublesimgle
dH2O 1425
10×BSA 710
10×NE 710
EcoRI 3.55
PstI 3.5-


UV照射実験(液体編)(~24)
-Ptrc-LuxR-Plux-cI-colE1-Amp-,-PcI-GFP-p15a-Cm-(BW)の2plasmidを使用。
グリストをつついて2ml培養×2(LB-Amp,Cm)(LB-Amp,cm,AHL100nM)
37℃で、12h培養後、濁ったらそのまま小さなプレートにLB培地ごと移してUVを照射する。UVの波長は254nm,UVランプまでの距離は8cm。
UVを照射して、15min,4h,8h,12h,たったら、両方のプレートからLB培地ごと20μlずつ採取しそれぞれ105希釈し、そこから20μlをそれぞれ(LB-Amp,Cm)(LB-Amp,cm,AHL100nM)のプレートに撒いた。


37℃で12h培養した後のコロニー数

AHLなしAHL100nM
15min 1360?
4h 4031
8h 100
12h 00


いづれのプレートもAHLが入っていないものはGFPが確認できたが、AHL100nMのものは確認できなかった。

2008.8.25

[http://partsregistry.org/Part:BBa_J22136 BBa_J22136](insert check済み)のグリセロールストックづくり

プレートに生えたコロニーをpickして、試験管で2ml培養(LB-Amp,37℃,12h)
培養した試験管から180μl,LB-Ampを880μlとって、OD=0.495にした。


OD=0.495培養液 0.67μl
60%グリセロール 0.33μl
20%グリセロールストック(計) 1.00ml

2008.8.28

Transformation

[http://partsregistry.org/Part:BBa_I7106 BBa_I7106](2007) 生えてきたコロニーを10ml培養してMini prep(60mlで溶出):

->Digestion
混ぜ表

double
dH2O 2
10×BSA 1
10×NE 1
EcoRI 0.5
PstI 0.5
DNA 5
TOTAL 10

Digestion 37℃、30分
プラスミドの濃度は33.6ng/μl


PCR
RBS+CI
混ぜ表

DNA 1
FW primer 2.5
VR primer 2.5
dNTPmix 5
thermo pol buffer 5
DNA pol(VENT) 1
dH2O 34
TOTAL 50


ゲルチェック


PCR産物 1
Dye 1
dH2O 4
TOTAL 6

->濃度は33.6ng/μg


ベクターのPCR
[http://partsregistry.org/Part:BBa_I7106 BBa_I7106]
混ぜ表

DNA 1
FW primer 5
VR primer 5
dNTPmix 10
thermo pol buffer 10
DNA pol(VENT) 1
dH2O 68
TOTAL 100


ゲルチェック


PCR産物 1
Dye 1
dH2O 4
TOTAL 6

->バンド出ず。

2008.8.30

Digestion

x-RBS-cI-s-p(780bp)

混ぜ表

double
dH2O 6
10×BSA 10
10×NE 10
PstI 2
XbaI 2
DNA 33.6ng/μl×30μl(1μg)
TOTAL 60

->30μlゲル抽出

->ゲル抽出

->Zymo Clean


5μ抽出,うち1μlをゲルチェック→OK,4μlはLigation用


Digestion

-e-x-Ptet-s-p-(PMB1,Amp)(Insert:54bp,Vector:2079bp)

混ぜ表

double
dH2O 4
10×BSA 10
10×NE 10
PstI 2
SpeI 4
DNA 75ng/μl×30μl(2μg)
TOTAL 60

->30μlゲル抽出

ゲル抽出

->Zymo Clean

->SAP


混ぜ表

dH2O 9
DNA 10
SAP 1
SAP Buffer 10
TOTAL 30

5μ抽出,うち1μlをゲルチェック→OK,4μlはLigation用


Ligation

混ぜ表

-b.g
dH2O 1.48
Ligase 11
Ligase Buffer 22
Vector 1.81
Insert 3-
TOTAL 1010

->Transformation(XL10G) ->CFU40(b.gは22)


コロニーPCR(16コつつく):PCR


混ぜ表

VF 2
VFR 2
dNTP 2
thermo pol buffer 2
Tag 0.3
dH2O 11.7
TOTAL 20

->Insertチェックしたら1つだけ正しい位置にバンドが出現。そのコロニーを2ml培養し、mini prepした。

->Mini prep



Digestion

x-RBS-cI-s-p(780bp)

混ぜ表

double
dH2O 6
10×BSA 10
10×NE 10
PstI 2
XbaI 2
DNA 33.6ng/μl×30μl(1μg)
TOTAL 60

Gel Extract

混ぜ表

Digestion産物 30
Dye 6
TOTAL 36

->Zymo Clean

->NFW5μlで溶出

->Gel Check


混ぜ表

dH2O 4
DNA 1
Dye 1
TOTAL 6

->Gel Check->OK


Digestion

-e-x-Ptet-s-p-(PMB1,Amp)(Insert:54bp,Vector:2079bp)

混ぜ表

double
dH2O 4
10×BSA 10
10×NE 10
PstI 2
SpeI 4
DNA 75ng/μl×30μl(2.25μg)
TOTAL 60

Gel Extract

混ぜ表

Digestion産物 30
Dye 6
TOTAL 36

->Zymo Clean

->NFW10μlで溶出


->SAP


混ぜ表

dH2O 9
DNA 10
SAP 1
SAP Buffer(×10) 10
TOTAL 30

->37℃で1h、乾燥機(65℃)で15min,

->Binding Bufferを90μl加え、VORTEX ->Zymo Clean

->NFW5μlで抽出

Gel Check


混ぜ表

dH2O 4
DNA 1
Dye 1
TOTAL 6

→ゲルチェックOK

Ligation

混ぜ表

-b.g
dH2O 1.48
Ligase 11
Ligase Buffer 22
Vector 1.81
Insert 3-
TOTAL 1010

->25℃で2h放置 ->Transformation(XL10G):

->CFU40(b.gは22)